1.核酸(DNA)-1・基本操作（粂和彦）
０．ＤＮＡの基礎の基礎
a.核酸はガラスに付着しやすいので、ガラス製品を使うときは、必ずシリコナイズをする。通常は、ポリプロピレンの容器を使う。
b.核酸は、文字どおり酸であり、水に溶かすと酸性となり、次第に加水分解を受ける。必ず、バッファーに溶かし、RNase, DNase 等のNucleaseがコンタミしても、少しはましなように、ＥＤＴＡを加える。そのため、核酸の溶解の基本液はＴＥと呼ばれ、10mM Tris-HCl (pH8.0 or 7.5) + 1mM EDTAである。ただし、Trisは、Northern blot の時のフォルマリンによるRNA変性を阻害するので、RNAは、水に溶かして凍らすことも多い。核酸の最も安定な保存法は、ＴＥに50%のエタノールを加えて、ｰ20度で凍らさないで保存することだと言われている。
１．フェノール・クロロフォルム抽出
【基本】ＤＮＡ溶液から、蛋白などを除くためにおこなう。フェノールとクロロフォルムの割合は、通常１：１で使用するが、フェノールが多いほど、核酸のフェノール層へ逃げやすく、回収率が悪くなる。クロロフォルムを入れないと、水層へのフェノールの混入が多くなる。逆に、クロロフォルムが多いと、除蛋白率が落ちる。また、ｐＨが酸性になると核酸が、フェノール層に逃げる。除蛋白率を上げるため、通常、ＳＤＳとＥＤＴＡを入れる（それぞれ終濃度0.5%と10mM程度）水層からフェノールを除くためには、普通はエタノール沈殿で充分だが、完全に除くためには、エタノール沈殿前に、エーテルや、クロロフォルム抽出を行う。
【操作】核酸を含む水溶液に、ＳＤＳとＥＤＴＡを加え、等量のフェノール・クロロフォルムを加えボルテックスで、よく撹拌する。（この後、短時間冷やすとより分離がよいが、通常必要ない）、エッペンドルフチューブで最高速（１４Ｋｒｐｍ）で３０秒以上遠心、（容量の多い場合は低速遠心機の３Ｋｒｐｍ，１０分程度でも可）、水層とフェノール層が分離する。上の水層を注意深く別の容器に移す。中間層は取らない。この操作１回での除蛋白は完全ではない。完全に行う場合は、３回以上繰り返す。
【試薬】フェノール：水飽和、Tris飽和、TE飽和など、目的に応じて作る。市販の核酸用フェノールを５５℃程度で溶かし、等量の水、（または1M Tris-HCl, pH8.0）を加えよく混和する。（時間があれば、こ室温で一晩、スターラーで撹拌する。）上清を除きもう一度水（または1M Tris-HCl）を加え混和する。上清を除き次に水（または、0.1M Tris-HCl, pH8.0）を加えよく混和する。この操作を４－５回で飽和するまで繰り返す。（最初に一晩おいた場合は１回で充分）水の場合は、最後に1N NaOHとpH試験紙にて、pHを７ー８に合わせる。クロロフォルムと混ぜない場合は、0.5%のハイドロキシキノリン(2-Quinolol)を加える。
フェノール・クロロフォルム（１：１）：上述のように作成したフェノールと等量のクロロフォルムを混和する。４８分の１量のイソアミルアルコールを加えるプロトコールもある。
２．エタノール沈殿（イソプロパノール沈殿）
【基本】核酸の濃縮、または、塩やフェノール等を除去する目的で行う。この操作は、蛋白質の塩析と同じ原理であり、沈殿に要する塩濃度、温度、時間、遠心の強さなどは、核酸の量や、バッファーのpHに、非常に大きく左右される。例えば、ｍｇオーダーのプラスミドでは、塩を入れず、室温でも析出し、3000xgの遠心５分で、95%以上回収できる。逆に、ｎｇオーダーでは、回収率を上げるために、様々な工夫（共沈物質の使用など）が必要となる。実験は、臨機応変に！頭も使うこと。下の操作は、一般的な一例である。
【操作】核酸を含む溶液に対して塩を加えて、2-2.5倍量のエタノール、または0.6-1倍量のイソプロパノールを加えて、よく撹拌する。量が多ければ室温で沈a殿するが－２０℃もしくは、－７０℃で２０分保存し遠心する。1μg/ml以上であればこの条件で沈殿する。不純物が含まれていなければ沈殿は、透明であるが、塩などが含まれていると白い。沈殿はさらに、ー２０度に冷やした70-80%エタノールで洗い乾燥させる。次の実験操作にもよるが、完全に乾燥させないことが肝心で、室温で数分放置して、エタノール臭がなくなればよい。真空遠心濃縮機を使う場合は、数十秒にする。
使う塩としては、
NaCl 終濃度 0.1M以上 (5M stock を1/10量)
NaOAc 終濃度 0.2M以上 (3M stock を1/10量)
NH4OAc 終濃度 2M以上 (4M stock を1/2量)(7.5M stock を1/3量)