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16.Non-RIでのハイブリダイゼーション(横溝岳彦、加藤和彦)

Version up @1998年3月18日

 

現在教室で行われているNon-RI ハイブリダイゼーションの二つのkitについて解説する。Alk Phos、VistraECF共にアルカリフォスファターゼでDNAをラベルするシステムだが、検出法が異なる。Alk Phosの方が、感度、簡便さの点で優れているように思われる。現在可能なことが確認されている実験レベルを列記する。

Alk Phos:Plaque hybridization, Northern blotting, Southern blotting (単離されたphage DNA, plasmid DNAでの)

VistraECF:Southern blotting (単離されたphage DNA, plasmid DNAでの)

 

 Alk Phos direct gene imageを用いたハイブリダイゼーション(横溝岳彦)

Alk Phos direct gene image:Amersham code RPN 3691 (Full system for 50 reaction and 5000 cm2 membrane)

CDP-star detection reagent:RPN 3683 (Detection system for 5000 cm2 membrane)

耐熱性のアルカリフォスファターゼでDNAをランダムラベルし、ケミフルオレッセンスで検出する方法である。75℃まで安定とのことなので、温度でstringencyをコントロールできる。予備実験は、1000 bpのプローブを用いた場合、ハイブリダイゼーション60℃、洗い65℃まで上げても問題がなかった。逆に、ハイブリダイゼーション50℃、洗い55℃ではnegativeを含む全てのplaqueがpositiveになったため、温度のコントロールは重要であると思われる。問題点はラベルの効率の確認が出来ない点、比較的高濃度のプローブが必要な点である(20 mlのハイブリダイゼーションで50-100 ngのdsDNAが必要である。)以下のプロトコールで20mlのハイブリダイゼーションができる。プラークハイブリダイゼーションでは15 cm 40枚の1st screeningでこの10倍程度のスケールで行う必要がある。プローブの切り出しはグラスビーズで行ったが特に問題はなかった。

1.プローブのラベリング

ラベルするDNA(100 ng)を10 μlとなるように水で希釈する。沸騰水浴またはthermal cyclar 99℃で5min処理後、直ちに氷中につけDNAを変性させる。

Denatured DNA                  10 micro L

Reaction buffer         10 micro L

Labelling reagent                2 micro L

Cross-linker sol (5x dilution)  10 micro L

ピペッティングで穏やかにまぜ、37℃で30分インキュベート。2時間以内に使用しない場合は等量のGlycerolを加えて-20℃で保存すれは半年間安定。

2.ハイブリダイゼーション

Hybridization buffer:kit添付のHybridization bufferにNaClを最終0.5 M, Blocking reagentを4 %となるように加え、良くとかす。溶けにくいので、Prehybridization用の水浴につけて暖めながら時々転倒混和する。説明書には1-2時間かかると書かれている。また、-20℃で保存可能と書かれているが、いったん凍らせたものを使った場合、Background(というか、ブチブチ)が上がるので、再度良く溶かす必要がある。いずれにしても、事前に暖めておくこと。

・0.125-0.25 ml/cm2となるようにハイブリダイゼーションバッグに入れ、55℃15分プレハイブリダイゼーション。

・プローブを5-10 ng/mlとなるように加え(熱処理してはいけません!)、さらに55℃ O/Nでハイブリダイゼーション。(High targetでは時間を短縮することも可能と思われる)

3.洗い

Stock solution

・0.5 M Na phosphate beffer pH 7.0

・1 M MgCl2

・20 x Secondary wash buffer for 1 L; Tris 121 g, NaCl 112 g, pH 10.0

Primary wash buffer for 1 L

Urea                             120 g

SDS                                1 g

0.5 M Na phosphate beffer pH 7.0 100 ml

NaCl                             8.7 g

1 M MgCl2                         10 ml

Blocking reagent                   2 g

Secondary wash buffer for 1 L

20 x Secondary wash buffer 50 ml

1 M MgCl2                   2 ml

・Primary wash buffer (2-5 ml/cm2, prewarmしておく)で55-75℃、10分 2回洗う。(筆者の経験では1000 bp, 100%マッチのプローブの場合、65℃が適当。55℃ではnon-specificなシグナルが観察された)

・Secondary wash bufferで室温、5分で2回洗う

4.CDP-starによるDetection

・CDP-star detection reagentを30-40 micro L/cm2加え、サランラップで覆う。2-5分放置。

・新しいサランラップに移し、オートラジオグラフィーの要領で感光させる。最初1-2時間で現像して、適切な露光時間を決める。

VistraECFランダムプライムDNAラベリング、シグナル増幅システムを用いたハイブリダイゼーション(加藤和彦)

ケミフルオレッセンス(ECF)とは、ECLとは異なりアルカリフォスファターゼを使用してAttoPhos(蛍光源性基質)のリン酸を解離させAttoFluor(蛍光物質)を生成後、FluorImagerのレーザー(488nm)でAttoFluorを励起させることにより540nm~560nmの強い蛍光を放出するというもので、この蛍光を検出することで高感度の標的分子を検出します。サザン、ノザンブロッティングやコロニー、プラークスクリーニングなどに利用できるとのことです。

Vistra ECF random prime labelling and signal amplification module(Amersham code RPN5752 ¥79,000)

1.プローブのラベリング

ラベルするDNA(25ng ~ 2μg)を10 ~ 34 μlとなるようにTE bufferで希釈する。沸騰水浴中で5min処理後、直ちに氷中につけDNAを変性させる。

Denatured DNA           50ng

Nucleotide mix          10μl

Primers                  5μl

Klenow enzyne (5u/μl)   1μl

D.W                      up to 50μl

ピペッティングで穏やかにまぜ、37℃で1h インキュベート。

0.5M EDTA を2μl加え、反応をとめる。

ラベルしたプローブは-15 ~ -20℃、暗所で6ヶ月は保存可能。

2.ラベリング効率のチェック

 5μlのラベルしたプローブと5倍希釈のnucleotide mix(Negative control)をHybond-N+にスポットする。2×SSCで60℃、15minゆっくり振とうしながら洗浄する。

10、25、50、100、250、500倍希釈の5×nucleotide mix を別のHybond-N+に5μlずつスポットする。

UV transilluminator か FluorImager で検出し、プローブのシグナルの強度が100倍希釈の5×nucleotide mix 以上であれば良い。

3.ハイブリダイゼーション

Hybridization buffer (100ml)

20×SSC                 25ml

10%SDS                   1ml

Liquid block             5ml

Dextran(M.W 500000)      5g

D.W                up to 100ml

60℃で30minプレハイブリをおこなう。

プローブを沸騰水浴中で5min処理し、氷中につけ変性させた後10ng/ml of hybri buffer となるように加える。(1.5μl of reaction product/ml of hybri buffer)

60℃、over night でゆっくり振とうしながらハイブリダイゼーション。

1×SSC, 0.1%SDS で60℃、15min ゆっくり振とうしながら洗浄。

さらに、0.5×SSC, 0.1%SDS で60℃、15min ゆっくり振とうしながら洗浄。

ハイブリまたは洗浄操作はRIプローブと同様にSSCの濃度、温度でストリンジェンシーをコントロールすることができる。

4.フルオレセインによる検出

 メンブレンを2×SSCで軽くすすぐ。FluorImager(フィルターなしか530nmのフィルターを用いる。)でシグナルを検出する。ここではかなり強いシグナルでないと検出できない。

5.Signal amplification system を用いた検出

  Buffer A (1000ml)

1M Tris-HCl(pH7.5)   100ml

NaCl         17.5g

D.W            up to 1000ml

 メンブレンをBuffer Aで軽くすすぎ、10倍希釈の liquid block を含むBuffer Aでゆっくり振とうしながら1h、室温でインキュベート。

5000倍希釈のanti-fluorescein AP conjugate、0.5%(w/v)BSAを含むBuffer Aでゆっくり振とうしながら1h、室温でインキュベート。

0.3%(v/v)Tween20を含むBuffer Aでゆっくり振とうしながら10min ×3 室温で洗浄。

6.Signal の検出

 Detection reagentは試薬(粉末)の入っている瓶に添付のバッファーを加え、10分ほど撹拌して完全に溶かす。(溶解後は分注して凍結保存)

メンブレンをDetection reagentに浸し、サランラップで包む。(メンブレンは乾燥させないこと)

FluorImager(フィルターは570nmのものをセットする)でシグナルを検出する。シグナルは時間とともに強くなる。